Применение пробиотиков в педиатрии: анализ лечебного и
профилактического действия с позиций доказательной медицины

Е. А. Корниенко*, доктор медицинских наук, профессор
Л. Н. Мазанкова**, доктор медицинских наук, профессор
А. В. Горелов***, доктор медицинских наук, профессор
Е. В. Ших***, доктор медицинских наук, профессор
Л. С. Намазова-Баранова****, доктор медицинских наук, профессор,
член-корреспондент РАН
И. А. Беляева****, доктор медицинских наук
* ГБОУ ФКП и ДПО СПб ГПМУ МЗ РФ, Санкт-Петербург
** ГБОУ ДПО РМАПО МЗ РФ, Москва
*** ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И. М. Сеченова МЗ РФ, Москва
**** ФГБУ НЦЗД МЗ РФ, Москва

В настоящее время в связи с появлением новых данных научных исследований в
области микроэкологии с применением геномики, протеомики, метаболомики и др.
произошло изменение представлений о состоянии и роли микробиоты в поддержании
различных жизненно важных функций макроорганизма [1]. Благодаря развитию новых
научных направлений в исследовании микроэкологии выявлены тонкие механизмы
реагирования микробиоты на различные стрессовые воздействия внешней среды и
установлены факторы, поддерживающие биохимические, метаболическое и
иммунобиологическое равновесия, необходимые для сохранения стабильных
взаимоотношений между макроорганизмом и микробиотой [2].

При микроэкологических нарушениях возможно проявление патогенных свойств
микробиоты с последующим развитием различных заболеваний, в генезе которых могут
лежать процессы нарушения колонизационной резистентности, снижения антимикробных
эффектов и барьерной функции эпителия, дефицита механизмов иммуномодуляции. Что
приводит к развитию воспалительных, аллергических, иммунодефицитных и др.
заболеваний, триггером которых является дисбиоз кишечника. Наиболее тяжело у
детей протекают так называемые эндогенные инфекции, вызванные активацией
условно-патогенной флоры, возникающие на фоне соматических заболеваний и
иммунодефицита и проявляющиеся развитием сепсиса, нередко заканчивающиеся
летально. В связи с этим актуальной проблемой является разработка мероприятий по
профилактике нарушений микробиоценоза и их коррекции при различных заболеваниях
инфекционного и неинфекционного генеза.

Для восстановления нарушений структуры микробиоценоза применяются пробиотики,
пребиотики, синбиотики [3].

Попытки воздействовать на кишечный микробиом и через него на здоровье
человека имеют долгую историю, связанную с именем великого русского ученого,
лауреата Нобелевской премии И. И. Мечникова, который в 1907 в своей книге «Этюды
оптимизма» описал благоприятную роль молочнокислых бактерий в сохранении
здоровья человека. С 30-х годов прошлого столетия ведут отсчет препараты,
содержащие лактобациллы и бифидобактерии. Сам термин «пробиотики», буквально
означающий «за жизнь», возник позднее, в 60-е годы, как альтернатива термину
«антибиотики», буквально означающему «против жизни». Lilly и Stillwell [4] ввели
понятие «пробиотики», а в 1974 г. Parker дал им определение [5].

В 2002 году определение пробиотиков было дано рабочей группой
Продовольственной и сельскохозяйственной организации ООН (Food and Agriculture
Organization, FАО, ФАО)/Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ)) [6]: «Пробиотики
— это живые микроорганизмы, которые при применении в адекватных количествах
вызывают улучшение здоровья организма-хозяина».

В этом определении заложены основные требования, предъявляемые к препаратам и
продуктам, которые претендуют на то, чтобы быть отнесенными к пробиотикам:
сохранность живых микробов, их достаточное количество и доказанная
эффективность. Однако ряд исследований последних лет продемонстрировал
эффективность не только живых микробов, но и определенных компонентов бактерий,
в частности, их ДНК [7], поэтому в дальнейшем определение пробиотиков может быть
пересмотрено. Тем не менее, в совместных рекомендациях ФАО/ВОЗ утверждается, что
в качестве пробиотиков не применяют неживые и генетически модифицированные
микроорганизмы, при этом микробы должны сохранять жизнеспособность при
прохождении по пищеварительному тракту вплоть до толстой кишки [8]. Следует
подчеркнуть также, что данное определение не предполагает обязательное
человеческое происхождение бактериального штамма в качестве критерия отбора, а
оценивать действие пробиотика рекомендуется в соответствии с оказываемым
эффектом [9]. Только штаммы, доказавшие свою клиническую эффективность в
рандомизированных плацебо-контролируемых исследованиях, могут быть использованы
для производства пробиотиков (табл. 1).

Пробиотики выпускаются в виде капсул, таблеток, пакетов-саше или порошков и
содержатся в различных ферментированных пищевых продуктах. При этом
пробиотические препараты и продукты могут содержать один микроорганизм или смесь
из нескольких видов. Наличие бактериального синергизма оправдывает применение
препаратов, содержащих симбиотные штаммы пробиотиков, так как способность к
адгезии увеличивается при сочетании штаммов.

В научных кругах пробиотики обозначаются в соответствии с номенклатурой, с
учетом их рода, вида и буквенно-цифрового обозначения, например, L.
rhamnosus GG (LGG). Для того, чтобы микроорганизм мог быть применен в
качестве пробиотика, он должен соответствовать следующим критериям (табл. 2).

При выборе пробиотического препарата возникает несколько проблемных вопросов,
первый из которых — выживаемость входящих в его состав микроорганизмов. Как
указывалось выше, функциональными свойствами, в частности, адгезией, обладают
только живые микробы. Поэтому сохранность жизнеспособных штаммов в
пробиотическом продукте или препарате является важнейшим требованием и должна
быть доказана в микробиологических исследованиях готового продукта. Для этого,
по рекомендации ФАО/ВОЗ, пробиотические штаммы должны храниться в виде коллекций
в соответствии с международной номенклатурой и периодически проверяться
бактериологически с последующим генотипическим анализом для подтверждения
свойств и устойчивости штамма [6]. Второй вопрос, который возникает при
назначении пробиотика, — оптимальная доза. Она может существенно варьировать и
устанавливается по клинической эффективности. Хотя единой дозы для различных
пробиотиков не существует, она устанавливается для каждого препарата по
результатам клинических исследований, рядом работ было показано, что минимально
достаточной дозой, способной осуществлять значимое действие, может считаться
доза не менее 10⁷ КОЕ в сутки [6, 11].

Следует учитывать разрушительное действие желудочного сока на незащищенную
микрофлору. Доказано, что лишь небольшое число штаммов лактобацилл и
бифидобактерий обладает кислотоустойчивостью, большинство микробов погибает в
желудке. Поэтому предпочтительны пробиотики, заключенные в кислотоустойчивую
капсулу. По данным A. Bezkorovainy [12], лишь 20–40% некоторых штаммов выживает
в желудке. Из 10⁸ микробных тел лактобактерий, принятых в
кислото­устойчивой капсуле, в кишечнике обнаруживается 10⁷, после
приема такого же количества в йогурте — 10⁴ микробных тел, а после
приема той же дозы в виде порошка натощак микробы в кишечнике не обнаруживаются
вовсе.

В тонкой кишке пробиотики подвергаются воздействию желчных кислот и
панкреатических ферментов. Вследствие этого многие микробы, например L.
fermentum KLD, почти полностью погибают. Это может объясняться усилением
проницаемости клеточной мембраны, которая развивается в ответ на воздействие
желчных кислот. В то же время LGG, L. reuteri, S. boulardii оказались
резистентны к воздействия желудочного и панкреатического сока, а также желчи.
Выживание большинства бактерий зависит от того, каким образом они принимаются: в
защитной капсуле, в виде йогурта, с молоком или без всякой защиты. Эти данные
ставят под сомнение эффективность незащищенных и не обладающих
кислотоустойчивостью пробиотиков, а также обосновывают целесообразность приема
незащищенных препаратов во время еды. Исключение составляют дети первого года
жизни, которые из-за более высоких значений рН в желудке могут получать
пробиотики в незащищенном виде, но и для них оптимален прием препарата во время
еды, поскольку буферные свойства молока повышают сохранность микроорганизмов.
Включение пробиотиков в состав молочной смеси обеспечивает их сохранность и
оправдано в связи с доказанным в ряде работ присутствием в женском молоке
микроорганизмов, в том числе — лактобацилл и младенческих бифидобактерий.
Научный комитет по питанию Еврокомиссии рекомендует использовать пробиотики в
детском питании [13]. Выбор штамма бифидобактерий должен проводиться в
соответствии с возрастными особенностями кишечного микробиома. Так, назначение
B. lactis BB12 целесообразно детям раннего возраста, а B. longum
BB46 — детям старшего возраста и взрослым.

Важнейшим условием выбора штамма в качестве пробиотика является безопасность.

Под безопасностью понимают:

• отсутствие патогенных свойств у микроорганизма;
• фенотипическую и генотипическую стабильность;
• отсутствие риска передачи генов антибиотикорезистентности другим микробам,
  обитающим в кишечнике;
• отсутствие возможности повреждать и преодолевать слизистый кишечный
  барьер;
• временный характер колонизации кишечника (способность к самоэлиминации).

Последний аспект был изучен по обнаружению микробов, входящих в состав
пробиотика, после окончания его приема. Срок персистирования в кишечнике
пробиотических микробов составил от 2 до 7 дней [14]. То есть целью назначения
пробиотиков является не колонизация ими кишечника пациента, а выполнение ими
необходимых функций и последующая самоэлиминация.

Механизм действия пробиотиков и возможности применения

Действие пробиотиков не сводится к простому заселению кишечника, как это
зачастую представляется. Влияние пробиотиков более сложно и многопланово, оно
осуществляется на трех уровнях:

1) в полости кишечника: конкуренция с патогенной и
условно-патогенной микробиотой;
2) на уровне эпителия кишечника: усиление защитного кишечного барьера;
3) на уровне иммунной системы кишечника: иммуномодулирующий эффект.

Действие пробиотиков осуществляется благодаря:

• способности синтезировать бактерицидные вещества, например, белки
  бактериоцины, а также продукты микробного метаболизма (молочная кислота и
  короткоцепочечные жирные кислоты, перекись водорода, сероводород);
• конкуренции за питательные вещества и факторы роста;
• снижению внутриполостного рН (молочная кислота, короткоцепочечные жирные
  кислоты);
• предотвращению адгезии и инвазии в слизистую оболочку патогенных микробов
  (колонизационная резистентность).

Многие пробиотики обладают прямым антитоксическим действием. Они способны
нейтрализовать цито- и энтеротоксины вирусов и бактерий: энтеропатогенных и
энтеротоксигенных штаммов эшерихий, клостридий, холеры. Так, в ряде исследований
[15] было показано снижение секреции натрия и воды и образования цАМФ в
кишечнике больных острой инфекционной диареей на фоне назначения пробиотиков.
S. Resta-Lenert, K. E. Barrett [16] показали, что L. acidophilus и
S. thermophilus не действуют на кишечную секрецию сами по себе, но снижают
ее после стимуляции энтеротоксином. Этим объясняется быстрое устранение диареи
на фоне назначения пробиотиков при острых кишечных инфекциях. Наиболее сильное
прямое антимикробное и антитоксическое действие было доказано у S. boulardii,
L. reuteri и LGG. Антитоксический эффект доказан у LGG (к Rotavirus, C.
difficile, E. coli), у E. faecium SF-68 (к C. difficile, E.
coli), у S. thermophilus (к E. coli), у L. reuteri
(к H. pylori, E. coli). Прямое антимикробное и антитоксическое действие
пробиотиков позволяет с успехом применять их в лечении инфекционных диарей, а
также для профилактики нозокомиальных и хронических инфекций [15].

Влияние пробиотиков на состояние кишечного барьера

Важнейшим свойством пробиотиков является их способность к адгезии. Они
фиксируются в слизистом слое над эпителием посредством гликоконъюгированных
рецепторов, обеспечивая тем самым колонизационную резистентность и препятствуя
адгезии и инвазии патогенов. На культуре колоноцитов Сасо-2 [17] было показано,
что живые штаммы пробиотиков адгезируются к эпителию и вызывают тем самым:

• укрепление цитоскелета клеток кишечного эпителия (усиливается экспрессия
  тропомиозина ТМ-5, синтез актина);
• усиление синтеза и фосфорилирования белков межклеточных соединений (зонула
  окклюдинов-1 и 2);
• повышение синтеза муцина (стимуляция генов MUC2, MUC3 и MUC5);
• стимуляцию синтеза и активации рецептора эпителиального фактора роста (EGF);
• увеличение синтеза полиаминов, являющихся гормоноподобными веществами,
  усиливающими процессы регенерации эпителия.

Все эти механизмы в конечном итоге способствуют усилению кишечного барьера
как на уровне эпителия, так и слизистого барьера. Эти эффекты пробиотиков были
установлены как in vitro, так и in vivo, что подтверждалось у
пациентов данными лактулоза-маннитолового теста [15]. Способность к адгезии
in vitro отличается у разных представителей пробиотиков. По данным M.
Juntunen с соавт. [18], она максимальна у LGG (34%), высока у B.
lactis BB12 (31%) и существенно ниже у L. acidophilus LA5 (4%),
L. casei Shirota (1%), L. paracasei F-19 (3%). Способность к
адгезии увеличивается при сочетании штаммов, в частности, при совместном
применении LGG + BB12 адгезия нарастает до 39–44%.

Влияние пробиотиков на иммунную систему и иммуномодулирующий эффект

Адгезия пробиотиков к кишечному эпителию и присутствие их в составе биопленки
в покрывающем поверхность эпителия слое слизи обеспечивает их взаимодействие с
иммунной системой кишечника. Они оказывают влияние на врожденный и адаптивный
иммунный ответ на уровне эпителия, дендритных клеток, моноцитов/макрофагов, Т- и
В-лимфоцитов, NK-клеток. Пробиотики препятствуют апоптозу путем активации
антиапоптотической Akt-протеинкиназы и улучшают тем самым состояние кишечного
эпителия, как было показано в эксперименте с назначением LGG при
цитокин-индуцированном апоптозе [19]. Пробиотические микробы распознаются
дендритными клетками, которые регулируют адаптивный Т-клеточный иммунный ответ
[20]. Под влиянием этих сигналов при встрече с неизвестным микробом может
происходить переключение дифференцировки Th0-лимфоцитов на Th1-путь и стимуляция
выработки провоспалительных цитокинов. Такой ответ типичен для инфекций. Но
дендритные клетки кишечника отвечают также за формирование иммунологической
толерантности к собственной кишечной микробиоте и пищевым антигенам: они
направляют дифференцировку Th0 в сторону образования Th3 и Tr (регуляторных)
клеток с соответствующей выработкой ИЛ-10 и трансформирующего ростового фактора
β. Толерогенное действие бифидобактерий младенческих штаммов было
продемонстрировано как в экспериментах in vitro на культуре кишечного
эпителия, так и в клинических исследованиях [21].

Очевидно, что разные штаммы пробиотиков способны по-разному восприниматься
иммунной системой, более того — восприятие каждого из них может быть
индивидуально, поскольку зависит от состояния иммунной системы и собственной
микробиоты хозяина. Большинство клинических и экспериментальных исследований
свидетельствуют о том, что только определенные пробиотические штаммы лактобацилл
(LGG, L. reuteri, L. casei) и младенческие штаммы бифидобактерий (B.
lactis BB12) оказывают стимулирующее воздействие на дендритные клетки
кишечника с последующим образованием Tr-клеток и выработкой ИЛ-10, то есть
способствуют формированию иммунологической толерантности. Эта селективность
объясняется способностью некоторых пробиотических штаммов связывать
внутриклеточные молекулы адгезии 3-grabbing non-integrin (DC-SIGN), что
облегчает индукцию дендритными клетками образования Tr-клеток [22]. Изменение
регулируемого дендритными клетками баланса адаптивного иммунитета под влиянием
пробиотиков сопровождается снижением, с одной стороны, провоспалительного ответа
(Th1, Th12), с другой — образования Th2 и синтеза IgE [23]. Так, прием LGG
в течение 2 недель сопровождался снижением продукции ИФН-γ и ИЛ-2, а также
ИЛ-4 периферическими Т-лимфоцитами [24]. Пробиотики усиливают образование
антител (IgG, IgA, IgM) B-лимфоцитами, этот эффект усиливает иммунный ответ
пациента на фоне инфекций и после вакцинаций [25]. Иммуномодулирующее действие
пробиотиков раскрывает широкие перспективы для их применения в разных
клинических ситуациях. Противовоспалительный эффект, оказываемый пробиотиками,
может быть не только локальным, но и системным и сопровождается снижением как
желудочно-кишечных, так и внекишечных проявлений воспаления [15].

Клиническое применение пробиотиков в педиатрии

При формировании показаний мы ориентировались на общепринятые критерии,
сформированные на основании результатов проведенных международных и
отечественных научных исследований (табл. 3).

Острые инфекционные диареи

Профилактика острой инфекционной диареи

Использование пробиотиков может предотвратить развитие острой инфекционной
диареи. В обзоре были проанализированы несколько РКИ, данные свидетельствуют о
статистически значимом эффекте некоторых пробиотических штаммов в составе
молочных смесей: LGG, L. reuteri, B. lactis BB12 и S. thermophilus TH4,
в профилактике острой инфекционной диареи [26]. Каких-либо побочных реакций или
отрицательного воздействия молочных смесей, обогащенных пробиотиками, на рост и
развитие здоровых детей не установлено. В целом для профилактики диареи у детей
и взрослых имеются доказательства эффективности LGG, B. lactis BB12.
Степень рекомендаций для профилактики острой инфекционной диареи: 1b — LGG,
B. lactis BB12 + S. thermophilus TH4, L. reuteri

Лечение острой инфекционной диареи

Несколько опубликованных мета­анализов результатов исследований эффективности
пробиотиков при острой диарее убедительно показали их эффективность при лечении
легкой и среднетяжелой формы вирусного гастроэнтерита. Назначение пробиотиков
сокращало продолжительность диареи в среднем на 1 день, однако эффект был
штаммспецифичным, поэтому для каждого из пробиотических препаратов он должен
оцениваться в отдельности, поскольку данные, полученные в результате
исследования одного пробиотика, не могут быть экстраполированы на другой.
Недостаток доказательств в отношении эффективности некоторых штаммов на сегодня
не означает отказ от дальнейших исследований и возможности их успешного
применения в дальнейшем.

В 2005 г. Shamir и др. продемонстрировали сокращение продолжительности
острого гастроэнтерита с 1,96 ± 1,24 до 1,43 ± 0,71 дня (р = 0,017), при
добавлении 10⁹ КОЕ S. thermophilus, B. lactis, L. acidophilus,
10 мг цинка и 0,3 г фруктоолигосахаридов в сутки [27]. Также несколько
исследований показали эффективность LGG в отношении сокращения
продолжительности острой вирусной диареи и уменьшение сроков госпитализации
детей [28, 29]. Guarino и др. [30] также продемонстрировали значительное
снижение частоты выделения ротавируса. Результаты проспективного исследования с
применением штамма LGG (10¹⁰ КОЕ/250 мл) в дополнение к
использованию регидратирующих растворов с участием 287 детей с острой диареей
показали значительное уменьшение длительности острой диареи — приблизительно на
10% (средняя продолжительность 123 ч в группе плацебо по сравнению с 110 ч в
экспериментальной группе) с улучшением ответа в ротавирусной группе [31].

В соответствии с рекомендациями экспертов Европейского общества
педиатрической гастроэнтерологии, гепатологии и нутрициологии по про- и
пребиотикам (European Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology and
Nutrition, ESPGHAN) 2014 [32], в настоящее время только два штамма могут быть
рекомендованы для лечения острой диареи у детей: LGG и S. boulardii.

L. reuteri DSM 17938 был также включен в перечень рекомендуемых
штаммов, но степень доказательности по этому штамму пока очень низкая. Столь же
очень низкая доказательная база, несмотря на положительные результаты
исследований, была получена при исследовании L. acidophilus LB.

В Российской Федерации согласно Приказам Министерства здравоохранения № 869н
от 08.11.2012 г. «Об утверждении стандарта первичной медико-санитарной помощи
детям при острых кишечных инфекциях и пищевых отравлениях легкой степени
тяжести», № 799н от 09.11.2012 г. «Об утверждении стандарта специализированной
медицинской помощи детям при гастроэнтеритах вирусной этиологии тяжелой степени
тяжести», № 1265н от 20.12.2012 г. «Об утверждении стандарта первичной
медико-санитарной помощи детям при диарее и гастроэнтерите предположительно
инфекционной этиологии средней степени тяжести» при лечении гастроэнтеритов
инфекционной этиологии рекомендовано наряду с регидратационной терапией
назначение пробиотических препаратов, содержащих следующие штаммы, подтвердившие
свою эффективность и безопасность: B. bifidum, L. acidophilus, S. boulardii,
B. longum + E. faecium.

В клиническом исследовании [33], проведенном отечественными учеными, доказана
эффективность применения при острых гастроэнтеритах у детей раннего возраста
пробиотика, содержащего комбинацию штаммов В. lactis BВ12 + S. thermophilus.
У 65 больных, находящихся под наблюдением, отмечалось достоверно более быстрое и
стойкое купирование эксикоза, диарейного синдрома, сокращение сроков пребывания
в стационаре.

Пробиотический препарат, содержащий штаммы E. faecium SF68 + B. longum
BB46, также эффективен в лечении острой диареи у детей [34] при
исследовании в группе 104 пациентов в возрасте от 1 мес до 9 лет. Диарея
прекращалась раньше в группе, получавшей комбинацию E. faecium SF68 + B.
longum BB46.

Международное руководство по пробиотикам и пребиотикам, опубликованное
Всемирной гастроэнтерологической организацией (World Gastroenterology
Organisation, WGO) в 2011 г., подтвердило применение вышеупомянутых пробиотиков
при лечении острой диареи у детей c уровнем доказательности 1a [35].

Степень рекомендаций для лечения острой инфекционной диареи: 1a — LGG и
S. boulardii; 2b — E. faecium SF68 + B. longum BB46; 2b — В. lactis BВ12 + S.
thermophilus TH4.

Профилактика антибиотик-ассоциированной диареи

В последние годы на фоне широкого применения антибактериальных препаратов в
педиатрии все большую актуальность приобретает проблема развития
антибиотик-ассоциированных диарей (ААД) [36, 37]. Частота развития ААД у детей
по данным разных авторов составляет от 5% до 40% [38–40]. Наиболее часто ААД
развивается на фоне приема цефалоспоринов II–III поколений, аминопенициллинов у
детей в возрасте до 5 лет [42]. К факторам риска развития ААД относятся также
хирургические вмешательства, пребывание детей в условиях стационара и ОРИТ,
иммунодефицитные состояния, нарушение нутритивного статуса, воспалительные
заболевания кишечника (ВЗК). В наиболее тяжелых случаях ААД этиологически
связана с C. difficile, у 20% она принимает рецидивирующее течение.

В многочисленных работах зарубежных авторов [43–48] доказано, что применение
антибиотиков приводит к выраженным глубоким нарушениям микробиоты кишечника,
характеризующимся дефицитом индигенной флоры и колонизацией кишечника
токсинообразующими штаммами C. difficile. Спонтанная выработка токсинов
А и В C. difficile может также активироваться на фоне применения
неспецифических противовоспалительных препаратов, химиотерапии, антидепрессантов
— лекарственных средств, которые могут воздействовать на нарушение
микробиоценоза кишечника в результате снижения иммунологической толерантности.
Токсинообразующие штаммы C. difficile являются этиологическим фактором
C. difficile-инфекции, характеризующейся развитием на фоне
антибактериальной терапии диареи различного характера: от осмотической до колита
(гемоколита); в тяжелых случаях псевдомембранозного колита [42]. Тяжесть
клинических проявлений C. difficile-инфекции связана с развитием
токсикоза, эксикоза, кишечных кровотечений, токсического мегаколона, перфорации
кишечника. C. difficile-инфекция характеризуется рецидивирующим
течением, при псевдомембранозном колите возможен летальный исход.

В связи с частотой развития ААД и множественных факторов риска, актуальной
является проблема профилактики и поиск эффективных методов лечения C.
difficile-инфекции, основанных на принципах восстановления нарушений
микробиоты и подавления роста и токсинообразования C. difficile.
Современные данные доказательной медицины и рекомендации международных
организаций указывают на приоритет применения пробиотиков и при лечении C.
difficile-инфекции у детей наряду с применением противоклостридиозных
препаратов (ванкомицин, метронидазол) [49].

Важное значение приобретает проблема ограничения применения антибактериальных
препаратов и профилактика развития ААД и C. difficile-инфекции путем
применения пробиотиков на фоне назначения антибактериальных препаратов. Позиция
рабочей группы Европейского общества педиатрической гастроэнтерологии,
гепатологии и питания по про- и пребиотикам [50] состоит в признании
целесообразности включения пробиотиков в Рекомендации по лечению диарей,
основанные на систематическом обзоре результатов метаанализов и
рандомизированных клинических исследований.

Одним из самых крупных метаанализов, оценивающих эффективность применения
пробиотиков в терапии диарей, является Кохрановский обзор (2010, 2013) [51, 52],
согласно которому к пробиотикам с позитивным сильным уровнем рекомендаций при
инфекционных диареях, в том числе и ААД, относится Lactobacillus GG. LGG
в настоящее время один из самых изученных штаммов в мире (более 400 публикаций и
15 рандомизированных двойных слепых плацебо-контролируемых исследований), что
вызывает повышенный интерес к нему клиницистов.

В 22 исследованиях показан положительный эффект от назначения пробиотиков при
ААД. Согласно метаанализу, проведенному Szajeweska в 2006 г. [53], пробиотики
снижают риск ААД у детей. Анализ подгрупп детей, у которых пробиотики
назначались с профилактической целью, показал снижение риска ААД в основном на
фоне применения LGG (95% ДИ 0,15–0,6), S. boulardii (95% ДИ
0,07–0,6) или В. lactis + S. thermophilus (95% ДИ 0,3–0,95). Эти данные
указывают на то, что у одного из 7 пациентов с диареей на фоне антибактериальной
терапии профилактика ААД окажется эффективной в случае одновременного назначения
любого из этих пробиотиков.

В проведенных 16 исследованиях по доказательству эффективности применения
пробиотиков для профилактики ААД, включающих наблюдения за 3432 детьми от двух
недель до 17 лет, получавшими антибиотики совместно с пробиотиками (Lactobacillus
SPP, Bifidobacterium SPP, Saccharomyces boulardii), доказано, что
Lactobacillus rhamnosus и Saccharomyces boulardii) в высоких дозах от 5 до
40 млрд КОЕ предотвращают развитие ААД через восстановление кишечной микрофлоры
[54].

Метаанализ L. V. McFarland (2015) включал 21 РКИ по профилактике C.
difficile-инфекции с изучением эффективности четырех пробиотиков. Отмечено,
что только два типа пробиотиков (S. boulardii и LGG) имели достаточное
количество испытаний для оценки профилактики C. difficile-инфекции, но
ни по одному из них результаты не достигли статистической значимости. Необходимо
продолжение исследований по профилактике рецидивов C. difficile-инфекции, по
мнению автора можно считать эффективной комбинацию пробиотических штаммов и
противоклостридиозных антибиотиков для предотвращения рецидивов C. difficile-инфекции
[55].

В Индии проведено РКИ по влиянию Lactobacillus при персистирующих
диареях у детей на фоне безлактозной диеты — отмечено в 2 раза снижение
длительности и частоты диареи у детей, получавщих LGG. Также
установлено, что LGG обладают высокой эффективностью при лечении
пациентов с C. difficile-инфекцией [56, 57]. Эффективность S.
boulardii доказана в нескольких РКИ для профилактики диареи, вызванной
C. difficile [58]. Степень рекомендаций для профилактики
антибиотик-ассоциированной диареи: 1a — S. boulardii; 1b — LGG;
1b — В. lactis BB12 + S. thermophilus TH4.

Инфекция Helicobacter pylori

Пробиотики демонстрируют обнадеживающие результаты в качестве адъювантной
терапии и редуцируют побочные эффекты назначения антибиотиков при проведении
эрадикации H. pylori. Для LGG, назначенной в дополнение к
стандартной тройной терапии, частота эрадикации составила 69% (0,98 ОР 95% ДИ
0,7–1,4) [59], для L. сasei DN-114 001–84,6% (95% ДИ 71,2–95,5) по
сравнению с 57,5% в контрольной группе (р = 0,0045) [60], для В. animalis и
L. casei — 45,5% по сравнению с 37,5% в контрольной группе (р = 0,345)
[61], для L. reuteri АТСС 55730 — 85% по сравнению с 80% в контрольной
группе (р > 0,05) [62], для добавки, содержащей L. сasei DN-114001,
L. bulgaricus + S. thermophilus, — 88,5% по сравнению с 51,5% в группе без
добавки (р < 0,01) [63]. Исследование S. boulardii показало частоту
эрадикации 93,3% по сравнению с 80,9% в контрольной группе (р = 0,750) [64]. В
тех же самых исследованиях оценивали частоту нежелательных явлений во время
лечения и выявили снижение выраженности симптомов.

Открытое РКИ, проведенное Е. А. Корниенко с соавт. [65] с оценкой
эффективности штаммов B. longum BB46 10⁷ + E. faecium SF68 10⁷,
проведенное у детей, показало улучшение иммунологического статуса пациентов
(повышение секреторного IgA и снижение провоспалительных цитокинов ФНО-α и ИЛ-1β
в слизистой оболочке желудка, усиление фагоцитарной активности) с одновременным
повышением процента эрадикации H. pylori.

Метаанализ 14 РКИ подтвердил, что добавление некоторых пробиотиков к
антихеликобактерной терапии усиливает результативность эрадикации и уменьшает
побочные эффекты антибиотиков.

Исследования монотерапии пробиотиками L. johnsonii, S. boulardii, L.
acidophilus LB, L. reuteri и L. gasseri OLL2716 (LG21) при хеликобактериозе
показывают уменьшение плотности колонизации, с сохранением низких уровней
патогена в слизистой оболочке желудка, однако монотерапия пробиотиками в
большинстве случаев не обеспечивает полной эрадикации H. pylori
[66–68].

Международные рекомендации (Маастрихт IV) и Российские рекомендации по
лечению инфекции H. pylori, основываясь на результатах отечественных и
зарубежных исследований, предусматривают назначение пробиотиков на фоне
стандартной эрадикационной терапии [69]. Степень рекомендаций для эрадикации H.
pylori (в качестве адъювантной терапии на фоне стандартной схемы лечения): 1b —
L. casei, B. longum BB46 + E. faecium SF68, S. thermophilus + L.
bulgaricus, S. boulardii, L. reuteri.

Функциональные расстройства желудочно-кишечного тракта

Синдром раздраженного кишечника (СРК) является наиболее распространенным
функциональным расстройством желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), которое
характеризуется дискомфортом или болями в животе на протяжении 2 месяцев и
более, связанными с дефекацией или изменением функции кишечника в отсутствие
органического заболевания. Патогенез СРК многофакторный и включает в себя
изменение реактивности с повышением кишечной моторики и секреции в ответ на
внутрипросветные стимулы, такие как пища, воспаление, инфекционные или
эмоциональные факторы. Пробиотики снижают частоту манифестации функциональных
нарушений за счет модификации ферментативной и метаболической функций ЖКТ.
Большинство исследований было проведено у взрослых и лишь несколько у детей
(табл. 4).

Большое РКИ у детей в России, проведенное Е. А. Корниенко с соавт. [71],
включавшее 121 ребенка, продемонстрировало достоверное снижение симптомов СРК,
активности воспаления в слизистой оболочке толстой кишки как по гистологическим
данным, так и по уровню провоспалительных цитокинов и кальпротектина в кале,
уменьшение дисбиотических изменений и синдрома избыточного бактериального роста,
снижение висцеральной гиперчувствительности после курса пробиотиков в сравнении
с плацебо, достоверных различий между различными штаммами пробиотиков не
получено.

Метаанализ результатов 19 РКИ, включавших 1628 пациентов с СРК, подтвердил
эффективность пробиотиков при СРК, однако, учитывая разнообразие применявшихся
пробиотиков, пока нельзя сделать выводы, какие именно штаммы более эффективны
[72]. Степень рекомендаций для облегчения симптомов:

• функциональные расстройства ЖКТ: 1а — LGG; 1b — L. reuteri;
• СРК: 2a — B. lactis BB12 + S. thermophilus TH4.

Младенческие кишечные колики

Младенческие кишечные колики (МКК) — это повторяющиеся приступы беспокойства
и плача продолжительностью более 3 ч в день, не менее 3 дней в неделю на
протяжении 1 недели и более. Они наблюдаются у 5–19% детей в возрасте от 6
недель до 3–4 мес [73]. Этиология МКК окончательно не установлена, в их развитии
могут иметь значение несколько факторов: материнская депривация и курение,
пищевая аллергия, функциональная незрелость ЖКТ, а также нарушение моторики
кишечника. Последние исследования показали нарушения состава кишечной микробиоты
и метагенома у младенцев с МКК, в частности, уменьшение лактобацилл и увеличение
газо­образующих колиформ, а также более выраженные признаки воспаления слизистой
оболочки кишечника [74]. Ряд РКИ с использованием пробиотиков, 7 из них с L.
reuteri DSM 17 938 [75] и 6 — с использованием смесей, обогащенных двумя
пробиотическими штаммами В. lactis BB12 + S. thermophilus TH4 [76],
продемонстрировали эффективность в профилактике и лечении МКК. В 3 РКИ,
включавших 209 детей, эффективность L. reuteri сравнивали с симетиконом
или плацебо, уже через 7 дней от начала лечения наблюдалось значительное
сокращение времени плача, однако полная стабилизация состояния достигалась к 3
неделям терапии. Пробиотики сокращали время плача в среднем на 1 час, каких-либо
побочных эффектов не наблюдалось ни у одного ребенка [76].

Назначение L. reuteri DSM 17 938 с первых дней жизни 589
новорожденным в течение 90 дней оказало существенное профилактическое
воздействие и достоверно снизило частоту и выраженность функциональных
расстройств ЖКТ (срыгиваний, колик, запоров) к 3 месяцам в сравнении с плацебо
[77]. Степень рекомендаций для облегчения младенческих кишечных колик: 1b —
L. reuteri, В. lactis BB12 + S. thermophilus TH4.

Некротический энтероколит

В последнее время наблюдается повышенный интерес к изучению потенциальной
эффективности пробиотиков у недоношенных детей с целью профилактики
некротического энтероколита (НЭК). Были опубликованы несколько метаанализов
применения пробиотиков у недоношенных новорожденных. У новорожденных, родившихся
на сроке гестации менее 33 недель, получавших пробиотики, отмечался меньший риск
смертности вследствие НЭК на 53% и 64% соответственно, по сравнению с
контрольной группой [78]. Был сделан вывод, что пробиотики снижают риск НЭК и
смертности у недоношенных детей весом менее 1500 г. Однако не все исследованные
пробиотики имели одинаковую эффективность. Комбинации, используемые в
метаанализах Bin-Nun и др. [79] B. infantis + S. thermophilus + B. bifidus и
Lin и др. [80]. L. acidophilus + B. infantis, оказались наиболее
эффективными [81]. Более поздний метаанализ, опубликованный K. Alfaleh и др. в
2010 г., включавший 4 РКИ с общим количеством детей, равным 783, выявил
статистически значимое снижение риска тяжелого НЭК и смертельного исхода (р < 0,00001) [82]. Оценивались следующие штаммы: В. breve, S. boulardii,
комбинации Bifidobacterium и Streptococcus, LGG и L. acidophilus. Кроме
того, во всех исследованиях применение пробиотиков описывалось как безопасное и
хорошо переносимое [76–80]. Еще одно исследование показало, что профилактическое
применение L. reuteri вызывало статистически значимое снижение частоты
НЭК у детей: частота НЭК уменьшалась с 15,1% до 2,5% (р = 0,0475), необходимость
хирургического вмешательства или частота смертельного исхода вследствие НЭК
уменьшались с 8,2% до 2,5% (р = 0,1774). Нежелательные явления, связанные с
применением L. reuteri, не описывались [83].

Таким образом, применение пробиотиков значительно снижает риск тяжелых форм
НЭК и смертельных исходов. Степень рекомендаций для профилактики некротического
энтероколита: 1b — B. bifidum, B. infantis + L. acidophilus, B. infantis, B.
bifidum, S. thermophilus TH4; 2b — L. reuteri.

Безопасность

В целом пробиотики признаны полностью безопасными (Generally Recognized As
Safe, GRAS) и хорошо переносятся человеком. Безопасным штаммом был признан
B. lactis BB12 (статус GRAS), он одобрен к применению Управлением по
контролю за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (Food and Drug
Administration, FDA), а также Датским агентством медицинских препаратов как
натуральный продукт. S. thermophilus TH4 также был признан FDA
безопасным штаммом, ему присвоен статус GRAS.

Однако в крайне редких случаях, в первую очередь, у иммунокомпрометированных
пациентов, описаны случаи бактериемии и сепсиса, вызванного пробиотическими
бактериями. Рассчитано, что риск бактериемии от принятых внутрь лактобацилл
составляет менее 1 на 1 млн случаев [84], а риск фунгемии от S. boulardii
составляет 1 на 5,6 млн случаев [85]. Описанные в литературе редкие случаи
подобных осложнений подчеркивают необходимость осторожного применения
пробиотиков у детей с иммунодефицитными состояниями, а также с системной
воспалительной реакцией. В случае повышенного риска возможно назначение неживых
или инактивированных пробиотических штаммов или их отдельных активных
компонентов, таких как секретируемые белки или ДНК.

Штамм SF68 был идентифицирован как Enterococus faecium. В
данном штамме не выполнялось генных модификаций. SF68 не обладает
резистентностью к ванкомицину. SF68 был изучен в клиническом
исследовании с участием детей, в том числе грудного возраста, в котором не было
описано нежелательных явлений. E. faecium SF68 клинически эффективен в
профилактике ААД, а также в лечении диареи у детей, в сокращении
продолжительности диареи. Контролируемые, двойные слепые клинические
исследования показали, что лечение энтерита Е. faecium SF68 было
успешным как для взрослых, так и для детей, сокращая продолжительность диареи, а
также время, необходимое для нормализации стула. На основании более чем
20-летней истории использования Е. faecium SF68 подтверждено, что этот
штамм не представляет риска для здоровья человека.

Заключение

Учитывая многообразие механизмов действия пробиотиков, а также многочисленные
работы, доказавшие их эффективность в профилактике и лечении различной
патологии, показания к их назначению достаточно широки:

• профилактика и лечение острых кишечных инфекций легкой и средней степени
  тяжести;
• профилактика антибиотик-ассоциированной диареи;
• инфекция H. pylori — в качестве адъю­вантной терапии;
• профилактика и лечение функциональных расстройств ЖКТ: синдрома
  раздраженного кишечника и младенческих кишечных колик;
• профилактика некротизирующего энтероколита у недоношенных детей.

Учитывая различия в составе препаратов пробиотиков и строгие требования,
которые предъявляются сегодня к ним, можно рекомендовать к применению у детей
лишь те штаммы, которые доказали свою клиническую эффективность в
рандомизированных контролируемых исследованиях.

Наиболее изученными и доказавшими свою эффективность и безопасность
пробиотическими штаммами следует считать:

• LGG;
• B. lactis BB12 (в комбинации с S. thermophilus TH4);
• E. faecium SF68 (без и в комбинации с B. longum BB46);
• S. boulardii;
• L. reuteri.

Однако даже при условии содержания в препарате этих штаммов, каждый препарат
или продукт требует отдельной оценки своей клинической эффективности и
безопасности.

Широкий спектр функций, выполняемых пробиотическими штаммами, позволяет
использовать их разносторонний терапевтический потенциал для комплексного
многоуровневого воздействия на макроорганизм.

В связи с этим особую важность приобретает постоянный динамический анализ
лечебного и профилактического действия каждого отдельного пробиотического
препарата на микробиоту ребенка в возрастном аспекте с позиций новых научных
технологий и доказательной медицины с целью их рационального выбора при
заболеваниях различного генеза.

Литература

1. Бондаренко В. М., Рыбальченко О. В. Анализ профилактического и
   лечебного действия пробиотических препаратов с позиций новых научных
   технологий // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2015. № 2.
   С. 90–104.
2. Simon C., Daniel R. Metagenomic analyses: past and future trends
   // Appl Environ Microbiol. 2011, Feb; 77 (4): 1153–1161.
3. Бондаренко В. М. Молекулярно-генетические и
   молекулярно-биологические исследования представителей родов Bifidobacterium и
   Lactobacillus // Вестник Российской Академии медицинских наук. 2006. № 1. С.
   18–24.
4. Lilly D. M., Stillwell R. H. Probiotics: growth-promoting factors
   produced by microorganisms // Science. 1965; 147: 747–748.
5. Parker R. B. Probiotics, the other half of the antibiotic story
   // Animal Nutr Health. 1974; 29: 4–8.
6. FAO/WHO. Working group on drafting guidelines for the evaluation of
   probiotics in food. Guidelines for the evaluation of probiotics in food. 2002.
   ftp://ftp. fao.org/es/esn/food/wgreport2.pdf.
7. Madsen K., Jijon H., Jeung H. et al. DNA from probiotic bacteria
   exerts anti-inflammatory action on epithelial cells by inhibition of NF-kB //
   Gastroenterology. 2002, v. 122, A-64.
8. Probiotic bacteria in dietetic products for infants: a commentary by the
   ESPGHAN Committee on Nutrition // J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2004, v.
   38, p. 365–374.
9. Cruchet S., Furoes R., Maruy A. et al. The use of probiotics in
   pediatric gastroenterology: A review of literature and recommendations by
   Latin-American experts // Pediatr. Drugs. DOI 10.1007/s40272–015–0124–6.
10. Borchers A. T. et al. Probiotics and immunity // J Gastroenterol.
    2009; v. 4: p. 26–46.
11. Supplementation of infant formula with probiotics and/or prebiotics: a
    systemic rewiew and comment by the ESPGHAN Commitee on Nutrition // J. Pediatr.
    Gastroenterol. 2011, v. 52 (2), p. 238–250.
12. Bezkorovainy A. Probiotics: determinants of survival and growth
    in the gut // Am. J. Clin. Nutr. 2001, v. 73, s. 2, p. 399 s-405 s.
13. General report of the Scientific Committee on Food of European Commission
    on the revision of essential requirements of infant formulas and follow-up
    formulas, 2003; http://europa.en.int/comm/food/fs/sc/scf/index.en.html.
14. Mercenier A., Pavan S., Pot B. Probiotics as biotherapeutic
    agents: present knowledge and future prospects // Curr. Pharm. Des. 2003, v.
    9, s. 2, p. 175–191.
15. Ng S. C., Hart A. L., Kamm M. A. et al. Mechanisms of action of
    probiotics: recent advances // Inflamm.Bowel Dis. 2009, v. 15 (2), p. 301–312.
16. Resta-Lenert S., Barrett K. E. Live probiotics protect intestinal
    epithelial cells from the effects of infection // Gut. 2003, v. 52, s. 7, p.
    988–997.
17. Spinler J. K., Tawelchotipatr M., Rognerud C. L. et al.
    Human-derived probiotic Lactobacillus reuteri demonstrate antimicrobial
    activities targeting diverse enteric bacterial pathogens // Anaerobe. 2008, v.
    14, p. 166–171.
18. Juntunen M., Kirjavainen P. V., Ouwehand A. C., Salminen S. J.,
    Isolauri E. Adherence of probiotic bacteria to human intestinal mucus in
    healthy infants and during rotavirus infection // Clin Diagn Lab Immunol.
    2001; v. 8 (2): p. 293–296.
19. Yan F., Polk D. B. Probiotic bacterium prevents cytokine-induced
    apoptosis in intestinal epithelial cells // J. Biol. Chem. 2002, v. 277, p.
    50959–50965.
20. Ouwehand A., Isolauri E., Salminen S. The role of intestinal
    microflora for development of the immune system in early childhood // Eur. J.
    Nutr. 2002, v. 41, s. 1, p. 132–137.
21. Righy R., Kamm M. A., Knight S. C. et al. Pathogenic bacteria
    stimulate colonic dendritic cells to produce pro-inflammatory IL-12 while the
    response to probiotic bacteria is to produce anti-inflammatory IL-10 // Gut.
    2002, v. 50, A70.
22. Smits H. H., Engering A., van Der K. D. et al. Selective
    probiotic bacteria induce IL-10-producing regulatory T cells in vitro by
    modulating dendritic cell function through dendritic cell-specific
    intercellular adhesion molecule 3-grabbing nonintegrin // J. Allergy Clin.
    Immunol. 2005, v. 115, p. 1260–1267.
23. Houghteling P. D., Walker W. A. Why is initial bsterial
    colonization of the intestine important to infants’ and children’s health //
    J. Pediatr. Gasteroenterol. Nutr. 2015, v. 60 (3), p. 294–307.
24. Braat H., van Den B. J., van Tol E. et al. Lactobacillus
    rhamnosus induces peripheral hyporesponsiveness in stimulated CD4+ T cells via
    modulation of dendritic cell function // Am. J. Clin. Nutr. 2004, v. 80, p.
    1618–1625.
25. Fang H., Elina T., Heikki A. et al. Modulation of humoral immune
    response through probiotic intake // Immunol. Med. Microbiol. 2000, v. 29, p.
    47–52.
26. Szajewska H. et al. Probiotics in gastrointestinal diseases in
    children: hard and not-so-hard evidence of efficacy // J Pediatr Gastroenterol
    Nutr. 2006; 42: 454–475.
27. Shamir R. et al. Evaluation of a diet containing probiotics and
    zinc for the treatment of mild diarrheal illness in children younger than one
    year of age // J Am Coll Nutr. 2005; 24: 370–375.
28. Isolauri E. et al. A human Lactobacillus strain (Lactobacillus
    casei sp strain GG) promotes recovery from acute diarrhea in children //
    Pediatrics. 1991; 88: 90–97.
29. Shornikova A. V. et al. A trial in the Karelian Republic of oral
    rehydration and Lactobacillus GG for treatment of acute diarrhoea // Acta
    Paediatr. 1997; 86: 460–465.
30. Guarino A. et al. Oral bacterial therapy reduces the duration of
    symptoms and of viral excretion in children with mild diarrhea // J Pediatr
    Gastroenterol Nutr. 1997; 25: 516–519.
31. Guandalini S. et al. Lactobacillus GG administered in oral
    rehydration solution to children with acute diarrhea: a multicenter European
    trial // J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2000; 30: 54–60.
32. Guarino A., Ashkenazi S., Gendrel D. et al. ESPGHAN/European
    Pediatric Infectious Disease evidence-based guidelines for the management of
    acute gastroenteritis in children in Europe, update 2014 // J. Pediatr.
    Gastroenterol. Nutr. 2014, v. 59 (1), p. 132–152.
33. Мазанкова Л. Н. и др. Ротавирусная инфекция у детей раннего
    возраста: обоснование пробиотической терапии // Детские инфекции. 2011, № 2,
    с. 52–56.
34. Бондаренко В. М. Обоснование и тактика назначения в медицинской
    практике различных форм пробиотических препаратов // Фарматека. 2012, № 13, с.
    77–87.
35. WGO. Probiotics and Prebiotics. World Gastroenterology Organization. 2011.
    http://www.worldgastroenterology.org/assets/export/userfiles/2012%20
    Probiotics_NEW%20 FINAL_sp. pdf. Accessed 30 Aug 2015.
36. Применение антибиотиков у детей в амбулаторной практике. Методические
    рекомендации Под ред. А. А. Баранова и Л. С. Страчунского // Клин. микробиол.
    и антимикроб. химиотерапия. 2007. № 9 (3). С. 200–210.
37. Sommet A., Sermet C., Boelle P. Y., Tafflet M., Bernède C. et al.
    No significant decrease in antibiotic use from 1992 to 2000, in the French
    community // J Antimicrob Chemother. 2004. 54: 524–528.
38. Бельмер С. В. Антибиотик-ассоциированный дисбактериоз кишечника
    // РМЖ. 2004; т. 12: 3: 148–151.
39. Turke D., Bernet J. P., Marx J., Kemph H., Giard P., Welbaum O.
    et al. Incidence and risk factors of oral antibiotic-associated diarrhea in an
    outpatient pediatric population // J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2003; 37:
    22–26.
40. Alam S., Muchataq M. Antibiotic associated diarrhea in children
    // Indian Pediatr. 2009 Jun; 46 (6): 491–496.
41. Damrongmanee A., Ukarapol N. Incidence of antibiotic-associated
    diarrhea in a pediatric ambulatory care setting // J of the Med Assoc of
    Thailand. 2000: 90 (3): 513–517.
42. Мазанкова Л. Н., Юнес Б., Горбунов С. Г., Курохтина И. С.
    Эпидемиология и клинические варианты Clostridium difficile-инфекции у детей //
    Детские инфекции. 2012. № 3. С. 39–42.
43. Захаренко С. М., Пономарев С. В. Заболевания, ассоциированные с
    Clostridium difficile // Лечение и профилактика. 2012. № 3. С. 82–89.
44. Britton R. A., Young V. B. Interaction between the intestinal
    micro- biota and host in Clostridium difficile colonization resistance //
    Trends Microbiol. 2012. 20: 313–319.
45. Kelly C. P., Kyne L. The host immune response to Clostridium
    difficile // J. Med. Microbiol. 2011, 60: 1070–1079.
46. Loo V. G. et al. Host and pathogen factors for Clostridium
    difficile infection and colonization // N. Engl. J. Med. 2011. 365: 1693–1703.
47. Morinville V., McDonald J. Clostridium difficile — associated
    diarrhea in 200 Canadian children // Can J Gastroenterol. 2005. 19 (8):
    497–501.
48. Spivack J. G., Eppes S. C., Klein J. D. Clostridium difficile
    associated diarrhea in a pediatric hospital // Clin Pediatr. 2003. 42 (4):
    347–352.
49. McFarland L. V., Goh S. Preventing Pediatric
    Antibiotic-Associated Diarrhea and Clostridium difficile Infections with
    Probiotics: A meta-analysis // World J. Meta-Anal. 2013, 1, 102–120.?
50. Применение пробиотиков при острых гастроэнтеритах // Consilium medicum.
    2014. № 4. С. 53–58.
51. Johnston B. C., Goldenberg J. Z., Vandvik P. O., Sun X., Guyatt G. H.
    Probiotics for the prevention of pediatric antibiotic-associated diarrhea //
    Cochrane Database Syst Rev. 2011, Nov 9; (11): CD004827.
52. Applegate J. A., Christa L. Fischer Walker, Ramya Ambikapathi,
    Robert E. Black. Systematic review of probiotics for the treatment of
    community-acquired acute diarrhea in children // BMC Public Health. 2013, 13 (Suppl
    3): S16.
53. Szajewska H. et al. Probiotics in the prevention of
    antibioticassociated diarrhea in children: a meta-analysis of randomized
    controlled trials // J Pediatr. 2006; v. 149: p. 367–372.
54. Johnston B. C., Supina A. L., Ospina M. et al. Probiotics for the
    prevention of pediatric antibiotic-associated diarrhea // Cochrane Database
    Syst Rev. 2007; 2: CD004827.
55. Lynne V. McFarland. Probiotics for the Primary and Secondary
    Prevention of?C. difficile Infections: A Meta-analysis and Systematic Review
    // Antibiotics. 2015, 4, 160–178.
56. Saavedra J. Probiotics and infectious diarrhea // Am J
    Gastroenterol. 2000; 95 (1 suppl): S16–S18.
57. Surawicz C. M. Probiotics, antibiotic-associated diarrhea and
    Clostridium difficile diarrhea in humans // Best Pract Res Clin Gastroenterol.
    2003; 17: 775–783.
58. Advice for travelers // Treat Guidel Med Lett. 2004; v. 2 (21): p. 33–40.
59. Szajewska H. et al. Randomized, double-blind, placebo-controlled
    trial: effect of Lactobacillus GG supplementation on Helicobacter pylori
    eradication rates and side effects during treatment in children // J Pediatr
    Gastroenterol Nutr. 2009; v. 48: p. 431–436.
60. Sykora J. et al. Effects of a specially designed fermented milk
    product containing probiotic Lactobacillus casei DN-114 001 and the
    eradication of H. pylori in children: a prospective randomized double-blind
    study // J Clin Gastroenterol. 2005; v. 39: p. 692–698.
61. Goldman C. G. et al. Effect of a probiotic food as an adjuvant to
    triple therapy for eradication of Helicobacter pylori infection in children //
    Nutrition. 2006; v. 22: p. 984–988.
62. Lionetti E. et al. Lactobacillus reuteri therapy to reduce
    sideeffects during anti-Helicobacter pylori treatment in children: a
    randomized placebo controlled trial // Aliment Pharmacol Ther. 2006; v. 24: p.
    1461–1468.
63. Sykora J. et al. Supplements of one week triple drug therapy with
    special probiotic Lactobacillus casei immunitas (Strain DN-114 000) and
    Streptococcus thermophilus and Lactobacillus bulgaricus in the eradication of
    H. pylori-colonized children: a prospective randomised trial [abstract P0900]
    // J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2004; v. 39: S400.
64. Hurduc V. et al. A randomized, open trial evaluating the effect
    of Saccharomyces boulardii on the eradication rate of Helicobacter pylori
    infection in children // Acta Paediatr. 2009; v. 98: p. 127–131.
65. Корниенко Е. А. Инфекция Helicobacter pylori у детей. М.:
    Гэотар-Медиа, 2011. 265 с.
66. Boonyaritichaikij S. et al. Long-term administration of
    probiotics to asymptomatic pre-school children for either the eradication or
    the prevention of Helicobacter pylori infection // Helicobacter. 2009; v. 14:
    p. 202–207.
67. Cruchet S. et al. Effect of the ingestion of a dietary product
    containing Lactobacillus johnsonii La1 on Helicobacter pylori colonization in
    children // Nutrition. 2003; v. 19: p. 716–721.
68. Gotteland M. et al. Effect of regular ingestion of Saccharomyces
    boulardii plus inulin or Lactobacillus acidophilus LB in children colonized by
    Helicobacter pylori // Acta Paediatr. 2005; v. 94: p. 1747–1751.
69. Malfertheiner P., Megraud F., O’Morain C. A. et al. Management of
    Helicobacter pylori infection — the Maastricht IV/Florence Consensus report //
    Gut. 2012; v. 61: p. 646–664.
70. Spiller R. Review article: probiotics and prebiotics in irritable
    bowel syndrome // Alim. Pharmacol. Therap. 2008, v. 28 (4), p. 385–396.
71. Корниенко Е. А., Типикина М. Ю., Кубалова С. С. и др. Новые
    аспекты механизмов развития и лечения синдрома раздражённого кишечника //
    Вопросы практической педиатрии. 2011. Т. 6, № 5. С. 8–12.
72. Moayyedi P., Ford A. C., Talley N. J. et al. The efficacy of
    probiotics in the therapy of irritable bowel syndrome: a systemic review //
    Gut. 2008, v. 64, p. 654–667.
73. Lucassen P. L., Assendelft W. J., van Ejk J. T. et al. Systematic
    review of the occurrence of infantile colic in the community // Arch Dis.
    Child, 2001, v. 84, p. 398–403.
74. Anabress J., Indrio F., Paes B., Al Faleh K. Probiotics for
    infantile colic: a systematic review // BMC Pediatrics. 2013, v. 13, 186.
75. Savino F., Cordisco L., Tarasco V. et al. Lactobacillus reuteri
    DSM 17938 in infantile colic: a randomized double-blind, placebo controlled
    trial // Pediatrics, 2010, v. 126, p. e526–533.
76. Saavedra J. M. et al. Long-term consumption of infant formulas
    containing live probiotic bacteria: tolerance and safety // Am. J. Clin. Nutr.
    2004, v. 55, p. 128–131.
77. Indrio F., Di Mauro A., Riezzo G. et al. Prophylactic use of
    probiotics in the prevention of colic, regurgitation and functional
    constipation: a randomized clinical trial // JAMA Pediatr. doi:
    10.100/jamapediatrics.2013.4367.
78. Deshpande G. et al. Probiotics for prevention of necrotizing
    enterocolitis in preterm neonates with very low birthweight: a systematic
    review of randomised controlled trials // Lancet. 2007; v. 369: p. 1614–1620.
79. Bin-Nun A. et al. Oral probiotics prevent necrotizing
    enterocolitis in very low birth weight neonates // J Pediatr. 2005; v. 147: p.
    192–196.
80. Lin H. C. et al. Oral probiotics reduce the incidence and
    severity of necrotizing enterocolitis in very low birth weight infants //
    Pediatrics. 2005; v. 115: p. 1–4.
81. Wolvers D. et al. Guidance for substantiating the evidence for
    beneficial effects of probiotics: prevention and management of infections by
    probiotics // J Nutr. 2010; v. 140: 698 S–712 S.
82. Alfaleh K. et al. Probiotics reduce the risk of necrotizing
    enterocolitis in preterm infants: a meta-analysis // Neonatology. 2010; v. 97:
    p. 93–99.
83. Hunter C. et al. Effect of routine probiotic, Lactobacillus
    reuteri DSM 17938, use on rates of necrotizing enterocolitis in neonates with
    birthweight 1000 grams: a sequential analysis // BMC Pediatr. 2012; v. 12: p.
    142.
84. Borriello S. P. et al. Safety of probiotics that contain
    lactobacilli or bifidobacteria // Clin Infect Dis. 2003; v. 36: p. 775–780.
85. Karpa K. D. Probiotics for Clostridium difficile diarrhea:
    putting it into perspective // Ann Pharmacother. 2007; v. 41: p. 1284–1287.

Статья опубликована в журнале

Лечащий Врач